小鼠尾静脉注射操作需要注意什么？
首先，准备工作得做得万无一失。
小鼠的选择： 这可不是随便抓一只就行。一般我们用生长发育正常、体重在1825克之间的成年小鼠。太小了，尾巴细得像根线，血管又细又浅，你还没扎准，它就给你扭成麻花了。太大了，有些血管可能就没那么好找了。性别上来说，雄性小鼠的尾静脉通常比雌性更容易显露，但这也看个体差异。如果你是做对比实验，那所有的小鼠都得来源一致，状态也得差不多。
注射物和剂量： 这是重中之重！你到底是要给它打什么？抗生素？显影剂？还是什么基因改造的载体？浓度、体积、渗透压都要提前算好。打多了，小鼠受不了；打少了，效果出不来。渗透压不对劲，打进去就跟喝盐水一样，会刺激血管，甚至导致溶血。还有一个特别重要的点，很多东西是要在室温下才能用，或者需要避光保存，千万别温度不对或者光照下瞎折腾。
注射器和针头： 别以为随便拿个注射器就行。小鼠尾静脉注射，一般用1ml或者0.5ml的注射器，针头嘛，用26G到30G的都常见，越细越好找血管，也越不容易把血管弄破。针头一定要尖利、无损，钝了的针头扎进去，那感觉就像是用钝刀子割肉，小鼠会疼得厉害，而且更容易损伤血管。你得确保针头是新的，没用过的，哪怕是同一只小鼠，同一批实验，换只注射器也比用回原来的强。
固定小鼠的器具： 这是关键！小鼠这小东西，一旦开始折腾，你就知道什么是“浑身是劲”了。最常用的就是固定管或者叫做鼠笼套。这种管子有不同的尺寸，你要选择能把小鼠身体部分固定住，但头部和尾巴能露出来的。材质上，透明的亚克力或者聚碳酸酯的比较好，方便观察。另外，操作台面要防滑，小鼠容易滑脱。有些实验室会用特制的固定架，也行。如果你是新手，第一次操作，最好有人在旁边指导，或者先拿模型练练手。
其他辅助工具：
纱布或棉球： 用来蘸温水或者酒精，给尾巴保温和清洁。
凡士林或润滑剂： 有时候在尾巴血管不明显的时候，涂抹一点可以帮助血管显露。但要注意，不能涂太多，否则会影响针头进针。
光源： 一个好的光源很重要，可以让你清楚地看到尾巴的血管。台灯或者专门的显微镜灯都可以。
止血带（可选）： 有时候在尾巴根部稍微系一下，能让尾巴充血，血管更明显。但要非常轻柔，时间也不能太长，否则会影响血供。
计时器： 如果你的实验需要精确的时间点，最好有个计时器。
二、 操作步骤，步步为营。
1. 环境准备： 找一个安静、光线充足、没有干扰的地方。如果你是夏天操作，室温不能太高，小鼠容易中暑；冬天则要注意保暖，别让它冻着。最好在操作前，把小鼠从大笼子里移出来，放进操作前的暂留小笼子里，让它稍微适应一下，别一来就给它来个“惊喜”。
2. 小鼠的固定与保暖：
固定： 小心地将小鼠从暂留笼中移到固定管中。动作要轻柔，别把小鼠弄伤了。让小鼠的头部朝向固定管的细端，身体往里推。关键是让它的尾巴能从固定管的尾部开口伸出来，并且不能让它把尾巴往回缩。
保暖： 这是很多人容易忽视的一步，但对提高成功率至关重要。用温水（大概3740°C）浸湿的纱布或棉球，轻轻擦拭小鼠的尾巴，或者将小鼠尾巴放在温热的物体上（比如一个预热的金属块，但注意温度不能太高，以免烫伤）。让尾巴的温度升高，血管会扩张，更容易找到。你可以看到尾巴的颜色变红，血管纹路更清晰。
3. 血管的寻找：
小鼠的尾巴上有几条主要的静脉，最常用的是腹侧的中央静脉（就是尾巴腹面的那条粗大的血管）和两侧的侧静脉。中央静脉通常最粗，但有时也比较深。两侧静脉相对浅一些，更容易扎到。
找血管的时候，可以结合光源，从不同角度观察。有时候，在血管不明显的时候，可以在尾巴根部轻微地、短暂地施加一点压力（不是扎紧哦，只是稍微阻碍一下血流），让尾巴充血，血管就会更明显。
4. 进针：
用固定管套住小鼠身体，露出尾巴。用左手（如果你是右手操作者）轻轻握住小鼠的尾巴根部，或者用固定管的尾部开口来辅助固定，让尾巴固定住。
针尖斜面朝上，与血管走向大致平行，或者稍微呈一个小的角度。
以一个稳定但柔和的力度，将针头沿着血管的走向插入血管。关键是“贴着”血管走，而不是垂直或者横着往血管里硬扎。你可以感觉到针尖穿过皮肤和血管壁的那一瞬间。
当针尖进入血管后，通常会看到回血。如果没看到回血，可能是没进血管，或者针头穿过了血管壁，需要稍微回撤一点点，或者调整一下角度。千万不要在血管外瞎捅！
5. 注射：
一旦确认针头在血管内（有回血），就用右手轻轻推动注射器推杆，以缓慢、匀速的速度注入药液。
在注射过程中，要密切观察小鼠的反应，以及注射部位是否有肿胀。如果出现异常情况，比如小鼠突然抽搐，或者注射部位迅速肿胀，说明可能穿透了血管或者药液外渗了，要立即停止注射。
对于体积较大的药液，要分次注射，每次推一点点，确保药液能被吸收。
6. 拔针与止血：
注射完毕后，用另一只手（或者在推杆推到底之前，就把左手移过去）用沾有酒精的棉球或者纱布轻轻压住穿刺点。
以相同的角度，迅速而轻柔地拔出针头。拔出后，继续用棉球压住穿刺点，直到止血。一般压几秒钟就好了。
不要用力揉搓穿刺点，那样容易造成皮下血肿。
7. 后续处理：
将小鼠放回干净的鼠笼中。
观察小鼠的状况，是否有异常反应，比如精神沉郁、活动减少、注射部位红肿等。
如果实验需要，可以在注射后特定时间点采集血液或者进行其他检测。
三、 需要特别注意的几个坑。
过度的固定和粗暴的操作： 小鼠的尾巴虽然看着结实，但血管是很脆弱的。过度的用力固定，或者操作粗暴，很容易弄伤小鼠，造成血管破裂，血肿，甚至弄断尾巴。你想想，尾巴被拧麻花了，还能扎进血管吗？
针头钝了不换： 这是导致操作困难、疼痛增加、血管损伤的主要原因之一。别心疼那几根针头，质量好的针头能让你的效率事半功倍。
血管不明显强行操作： 遇到血管不明显的，别着急，多点耐心，多用点保温和显露血管的方法。如果实在不行，就换一只小鼠，或者换一个时间操作。强行操作只会带来更多的问题。
注射药液的温度和渗透压： 再次强调，不合适的温度和渗透压会直接影响实验结果，甚至对小鼠造成伤害。一定要反复确认。
注射速度太快： 有些药液或者物质，快速注入可能会对小鼠产生刺激作用，甚至引起休克。所以，一定要慢！
药液外渗： 注射的时候如果针头不在血管里，或者穿透了血管，药液就会打到皮下。皮下注射和静脉注射效果完全不一样。仔细观察注射部位，如果出现鼓包，说明可能外渗了，要立即停止。
尾巴的损伤： 频繁地在同一个部位注射，或者操作不当，会造成尾巴的损伤，比如形成血肿、坏死，影响后续的实验。最好能在不同的部位注射。
过度的保暖： 虽然保暖很重要，但也不能把小鼠的尾巴给烫伤了。温水浸泡的纱布，拧干一点，温热就好，别滚烫。
最后，再说一句心里话：
小鼠尾静脉注射这活儿，熟能生巧是真理。刚开始可能会觉得很别扭，成功率不高，别灰心。多看，多学，多练。找有经验的师兄师姐请教，看看他们是怎么做的。有时候，他们的一些小动作和经验，比书本上写得管用多了。耐心点，细心点，尊重生命，你会慢慢掌握这项技能的。别因为一两次的失败就觉得这事儿多难，只要你用心去做，总会成功的。
希望这些能帮到你！
网友意见
成功率>90%的人不请自来。
对于涉及动物实验的同学们，尾静脉注射绝对是一个难到令人咆哮的技术。
我在研一的时候就开始练尾静脉注射了。后来做过多次动物实验，打过药，纳米颗粒，细胞，DMSO（打完很难止血）。最多一次40只一个半小时打完。
我就假定是小鼠裸鼠了，因为这是我打过的最难的。
首先需要有一个容器放老鼠，可以固定也可以有活动余地，无需麻醉。
你可以买一个专用的。
也可以自己用离心管做一个。
熟练了以后，也可以像我一样用烧杯……不管多胖都能放进去……
针头的话我一般用27G的，长度其实无所谓，我习惯用1/2英寸的。胰岛素笔太软用着不习惯。提前把针装好放一旁。
再准备一坨棉花用来止血，不能用酒精棉。（有别的答主说用酒精棉止血，估计没有真正打过。用酒精棉根本无法止血，本来已经不流血的尾巴用酒精一撸又得开始冒血）
然后准备一个酒精棉，开始擦酒精，用撸的手法，撸到血管爆出来。尾巴上四条血管，以菊花那一条为下，则左右最好打，撸的话也先撸左右中的一条。
然后就可以开打了。打完用棉花按住针孔，拔针无情，然后止一会儿血，开始下一只……
打得时候请使用我成功率最高的姿势：
此时左手食指中指夹住老鼠尾巴，任凭它在前面怎么抖尾巴被夹住的后半部分基本不动。无名指作为一个支点，与大拇指配合将尾巴弯曲，曝露出进针的位点，也就是叉叉处。从侧面看是这样的：
尾巴弯曲的地方就是我们进针的位置。而针则是以与血管平行的角度刚好扎进血管的。
做到这些，姿势就算对了。接下来就是更重要的技巧了：我每扎一针下去，我基本能感觉出来这一针打得对不对。这个判断的过程是发生在针扎进去了，但手还没有推针的时候。
我一开始练习的时候很多时候针没扎进血管，或者扎进血管又穿出血管，我们右手很难推动针，强推会把液体打到血管外的组织里，把尾巴上打“白”一小段。这时候，白色以下的尾巴在恢复前就暂时不能用了。
所以如果你扎针进去的时候，感觉稳了，这一针肯定打成了，再推针，是最节约尾巴的方法。
扎偏了其实并不可怕，抽出来一点，换个角度再扎，直到你感觉稳了。
接下来我就试着告诉各位怎么判断这一针成没成。
还是以裸鼠为例，血管本身带有青色。
当针扎进血管的时候，会有一段血管颜色变浅，有点发白，这是你的针头在血管里面。并且你的针伸进血管1cm的这一过程中，感觉很顺畅，没有什么阻力。这种情况下你的针基本上就扎对了。推针的时候会感到一阵舒爽。
但是有的时候扎偏了也会感觉伸进去的那一部分血管颜色变浅，但是进针的过程有一定阻力。这种情况就要抽出来再扎。这种感觉很难用语言描述，需要在练习中自己体会。
练习的方法，买很多只昆明白，每天把所有都打一遍。当成功进针的时候，闭上眼睛回忆一下刚才进针的感觉，手型以及进针位置。多总结，形成肌肉记忆。在之后的练习中着重训练我所说的进针后推针前的判断。其实很多情况下要长期连续给药的时候，尾巴是要节约着用的。什么意思呢？有的药打多了老鼠尾巴会烂，变得很难打，着一只老鼠基本就废了。所以我们都是从细的地方开始打。实际操作的时候3根静脉，每根打四针可以做到12次给药。这样对于一个药效实验周期基本上够了。所以各位在练习的时候，也要尽量从尾巴细的地方
由于我们学校animal care unit动物伦理上的限制，我无法给各位拍摄打的过程，只能在此嘴一番了。
说到底尾静脉注射技术就像投篮一般，有的时候蒙一下能进，或者手感热的时候连续进球，但其他时候还是不够稳定。如果想要提高成功率还是需要在找对方法的情况下，经常练习手感。至于姿势问题大家不必拘泥，我也只是把对我而言最合理的姿势分享给大家，各位在练习的过程中也可以微调，毕竟无论教科书般的投篮姿势还是端尿盆儿，只要能进球就好。
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